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PCR擴(kuò)增產(chǎn)物的克隆
  • 發(fā)布日期:2018-05-10      瀏覽次數(shù):2432
    • PCR擴(kuò)增產(chǎn)物的克隆可以:(1)獲得目的DNA片段;(2)用于原核表達(dá)的研究;(3)廣泛應(yīng)用于分子生物學(xué)相關(guān)研究。

      • 平端連接法

      實(shí)驗(yàn)方法原理

      平頭連接是將制備好的平頭載體和補(bǔ)平或削平的PCR產(chǎn)物直接進(jìn)行連接。載體可用EcoR VSma I切成平頭;PCR產(chǎn)物純化后,可以在22DNA聚合酶I作用30min(利用該酶所具有的3’→5’外切酶活性和5’→3’的聚合酶活性)。

      如果要求不高,PCR產(chǎn)物也可不加處理。如果使用Stratagene公司的pfu DNA聚合酶或New England Biolabs公司的Vent DNA聚合酶,這兩種酶有5’→3’校對能力,擴(kuò)增出來的PCR產(chǎn)物已經(jīng)是平頭,可以不作平端處理。平端連接的一個(gè)顯而易見的缺陷是連接效率低下,即使使用很高單位的連接酶,或在反應(yīng)體系中加入PEG 8000,也只能很有限地提率。

      通常情況下,PCR產(chǎn)物可直接與平端載體DNA進(jìn)行連接,但其連接效率效低。因?yàn)?/span>Taq DNA聚合酶具有非模板依賴性末端轉(zhuǎn)移酶活性,能在兩6 DNA鏈的3'末端加上一個(gè)多余的堿基,使合成的PCR產(chǎn)物成為3'突出一個(gè)堿基的DNA分子。

      這種DNA分子的連接效率很低。由于PCR產(chǎn)物的效率通過較高,在采用大量T4 DNA連接酶并配以5-10u T4 RNA連接酶時(shí),可顯著提高其連接效率。

      對于較短PCR產(chǎn)物,用PUS19Hinc位點(diǎn)進(jìn)行克隆,以X-galIPTG篩選,常可得到足量重組子。另一種提高克隆效率的途徑是先用Klenow大片段或T4DNA聚合酶消去3'末端突出堿基將PCR產(chǎn)物變成平端DNA,然后再用平端連接法克隆PCR產(chǎn)物。

      實(shí)驗(yàn)材料

      模板DNA

      試劑、試劑盒

      SauIKlenow片段T4連接酶

      儀器、耗材

      移液器、移液器吸頭、PCR小管、DNA擴(kuò)增儀、電泳槽、電泳儀、臺式高速離心機(jī)

      實(shí)驗(yàn)步驟

      一、PCR反應(yīng)

       

      1.  依次混勻下列試劑

       

      1H2O35 μl

       

      210×PCR反應(yīng)緩沖液:5 μl

       

      325 mmol/L MgCl24 μl

       

      4 4dNTP4 μl

       

      5)上游引物(引物1):0.5 μl

      6)下游引物(引物2):0.5 μl

       

      7)模板DNA(約1 ng):0.5 μl

       

      8)混勻后離心5秒。

       

      2.  將混合物在94下加熱5分鐘后冰冷,迅速離心數(shù)秒, 使管壁上液滴沉至管底,加入Taq DNA聚合酶(0.5 μl2.5 U),混勻后稍離心,加入一滴礦物油覆蓋于反應(yīng)混合物上。

       

      3.  94變性1分鐘,45退火1分鐘, 72延伸2分鐘, 循環(huán)35輪,進(jìn)行PCR。zui后一輪循環(huán)結(jié)束后, 72下保溫10分鐘,使反應(yīng)產(chǎn)物擴(kuò)增充分。

       

      二、電泳

       

      10 μl擴(kuò)增產(chǎn)物用1%瓊脂糖凝膠進(jìn)行電泳分析,檢查反應(yīng)產(chǎn)物及長度。

       

      三、PCR產(chǎn)物的純化

       

      擴(kuò)增的PCR產(chǎn)物如利用T-Vector進(jìn)行克隆,可直接使用,如用平未端或粘性未端連接,往往需要將產(chǎn)物純化。

       

      1.  /fang

       

      1)取反應(yīng)產(chǎn)物加100 μl TE。

       

      2)加等體積氯fang混勻后用微型離心機(jī)10000 rpm離心15秒,用移液器將上層水相吸至新的小管中。這樣抽提一次, 可除去覆蓋在表面的礦物油。

       

      3)再用酚:fang:異戊醇抽提二次,每次回收上層水相。

       

      4)在水相中加300 μl 95%乙醇,置-2030 min沉淀。

       

      5)在小離心機(jī)上10000 rpm離心10 min,吸凈上清液。加入1 ml 70%乙醇,稍離后,吸凈上清液.重復(fù)洗滌沉淀2次。將沉淀溶于7 ml ddH2O 中,待用。

       

      2.  Wizard PCR DNA純化系統(tǒng)

       

      Wizard PCR DNA純化系統(tǒng)可以快速、有效、可靠地提取PCR擴(kuò)增液中的DNA,提純后的DNA可用于測序、標(biāo)記、克隆等。 該系統(tǒng)中含有的試劑和柱子可供50PCR產(chǎn)物的純化,試劑包括:50 ml Wizard PCR DNA純化樹脂、5 ml 直接提取緩沖液、50 Wizard微型柱。

       

      1)吸取PCR反應(yīng)液水相放于1.5 ml eppendorf管中。

       

      2)加100 ml直接提取緩沖液,渦旋混勻。

       

      3)加1 ml PCR DNA純化樹脂,1分鐘內(nèi)渦旋混合3次。

       

      4)取一次性注射器, 取出注塞,并使注射筒與Wizard微型柱連接,用移液槍將上述混合液加入注射筒中,并用注塞輕推,使混合物進(jìn)入微型柱。

       

      5)將注射器與微型柱分開,取出注塞, 再將注射筒與微型柱相連,加入2 ml 80%異丙醇,對微型柱進(jìn)行清洗。

       

      6)取出微型柱置于eppendorf管中,12 000 g離心20秒,以除去微型柱中的洗液。

       

      7)將微型柱放在一個(gè)新eppendorf管中,加50 μl TE或水,靜止1分鐘后,12 000 g離心20秒。

       

      8)丟棄微型柱,eppendorf管中的溶液即為純化DNA,存放于4-20

       

      四、載體加dT

       

      1.  1 μg pUC19Sma全酶切。

       

      2.  在小管中按上述PCR反應(yīng),加入各種混合物,除將4 μl 4dNTP改為4 μl 25 mM dTTP。

       

      3.  加入1 μl(5U)Taq DNA聚合酶在72下加熱2 h。

       

      4.  按前面三中所述,用酚:fang:異戊醇抽提二次。

       

      5.  加入2倍體積 95%乙醇,在-20下沉淀1 h。

       

      6、離心,用70%乙醇漂洗后,真空抽干,溶于10ml ddH2O中。

       

      五、PCR產(chǎn)物與載體粘末端連接

       

      1.  7 ml PCR產(chǎn)物中加1 mldT尾的pUC質(zhì)粒。

       

      2.  1 ml T4DNA連接酶,1 ml 10×連接緩中液,混勻,16連接過夜。

       

      3.  5 ml連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化感受態(tài)細(xì)胞并篩選重組子。

       

      六、PCR產(chǎn)物3'突出端切平及平末端連接

       

      1.  50 mlPCR產(chǎn)物中,直接加0.5 ml T4 DNA聚合酶混勻。

       

      2.  37反應(yīng)10分鐘后,70滅活10分鐘。

       

      3.  用酚:fang抽提2次。

       

      4.  乙醇沉淀。沉淀用70%乙醇漂洗后,真空抽干,溶于7 ml ddH2O中。

       

      5.  質(zhì)粒用Smal 切開后,70 15分鐘滅活酶,取1 ml (約0.1 mg)加入上述PCR產(chǎn)物中。加T4 DNA連接酶1 ml ,連接緩沖液1 ml 。

       

      6.  5 ml 連接產(chǎn)物轉(zhuǎn)化感受態(tài)細(xì)胞并篩選重組子。

       

       

       

       

       

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      注意事項(xiàng)

      1.  PCR反應(yīng)液可直接用于連接,但zuihaoPCR產(chǎn)物純化后進(jìn)行連接,既能去掉dNTPATP競爭連接酶又能濃縮PCR產(chǎn)物。

      2.  PCR非常靈敏, 操作應(yīng)盡可能在無菌操作臺中進(jìn)行。

       

      3.  吸頭、離心管應(yīng)高壓滅菌, 每次吸頭用畢應(yīng)更換, 不要互相污染試劑。

       

      4.  加試劑前, 應(yīng)短促離心10秒鐘, 然后再打開管蓋, 以防手套污染試劑及管壁上的試劑污染吸頭側(cè)面。

       

      5.  應(yīng)設(shè)含除模板DNA所有其它成分的負(fù)對照。

       

      6.  純化樹脂在使用前必須充分混勻。

       

      7.  PCR產(chǎn)物中礦物油應(yīng)盡量吸去,否則會影響提取DNA 產(chǎn)量。

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      其他

      一、 PCR反應(yīng)中的主要成份


      1.  引物

      PCR反應(yīng)產(chǎn)物的特異性由一對上下游引物所決定。引物的好壞往往是PCR成敗的關(guān)鍵。引物設(shè)計(jì)和選擇目的DNA序列區(qū)域時(shí)可遵循下列原則:

      1 引物長度約為16-30 bp 太短會降低退火溫度影響引物與模板配對,從而使非特異性增高。太長則比較浪費(fèi),且難以合成。

      2)引物中G+C含量通常為40%-60%,可按下式粗略估計(jì)引物的解鏈溫度 Tm4(G+C)+2(A+T)


      3)四種堿基應(yīng)隨機(jī)分布,在3'端不存在連續(xù)3個(gè)GC,因這樣易導(dǎo)致錯誤引發(fā)。


      4)引物3'端與目的序列閱讀框架中密碼子*或第二位核苷酸對應(yīng), 以減少由于密碼子擺動產(chǎn)生的不配對。


      5)在引物內(nèi), 尤其在3'端應(yīng)不存在二級結(jié)構(gòu)。


      6)兩引物之間尤其在3'端不能互補(bǔ), 以防出現(xiàn)引物二聚體, 減少產(chǎn)量。兩引物間zuihao不存在4個(gè)連續(xù)堿基的同源性或互補(bǔ)性。


      7)引物5'端對擴(kuò)增特異性影響不大, 可在引物設(shè)計(jì)時(shí)加上限制酶位點(diǎn)、核糖 體結(jié)合位點(diǎn)、起始密碼子、缺失或插入突變位點(diǎn)以及標(biāo)記生物素、熒光素、地gao辛等。通常應(yīng)在5'端限制酶位點(diǎn)外再加1-2個(gè)保護(hù)堿基。


      8)引物不與模板結(jié)合位點(diǎn)以外的序列互補(bǔ)。所擴(kuò)增產(chǎn)物本身無穩(wěn)定的二級結(jié)構(gòu), 以免產(chǎn)生非特異性擴(kuò)增,影響產(chǎn)量。


      9)簡并引物應(yīng)選用簡并程度低的密碼子, 例如選用只有一種密碼子的Met, 3'端應(yīng)不存在簡并性。否則可能由于產(chǎn)量低而看不見擴(kuò)增產(chǎn)物。

       

       

      10)一般PCR反應(yīng)中的引物終濃度為0.2-1.0 μmol/L。引物過多會產(chǎn)生錯誤引導(dǎo)或產(chǎn)生引物二聚體, 過低則降低產(chǎn)量。利用紫外分光光度計(jì), 可計(jì)算引物濃度, 1cm光程比色杯中,260nm下,引物濃度可按下式計(jì)算:

       

      X mol/L OD260/ A(16000)+C(70000)+G(12000)+T(9600)

       

      X 引物摩爾濃度,A、CG、T:引物中4種不同堿基個(gè)數(shù)。

       

      2.  4種三磷酸脫氧核苷酸(dNTP)

      1dNTP應(yīng)用NaOH pH調(diào)至7.0,并用分光光度計(jì)測定其準(zhǔn)確濃度。

      2dNTP原液可配成5-10 mmol/L并分裝,-20貯存。一般反應(yīng)中每種dNTP的終濃度為20-200 μmol/L

      3)理論上4 dNTP20 μmol/L,足以在100 μl反應(yīng)中合成2.6 μgDNA。當(dāng)dNTP終濃度大于50 mmol/L時(shí)可抑制Taq DNA聚合酶的活性。4dNTP的濃度應(yīng)該相等,以減少合成中由于某種dNTP的不足出現(xiàn)的錯誤摻入。

       

      3.  Mg2+

      1Mg2+濃度對Taq DNA聚合酶影響很大,它可影響酶的活性和真實(shí)性,影響引物退火和解鏈溫度, 影響產(chǎn)物的特異性以及引物二聚體的形成等。

      2)通常Mg2+ 濃度范圍為0.5-2 mmol/L.對于一種新的PCR反應(yīng),可以用0.1-5 mmol/L的遞增濃度的Mg2+ 進(jìn)行預(yù)備實(shí)驗(yàn),選出zui適的Mg2+濃度。

      3)在PCR反應(yīng)混合物中, 應(yīng)盡量減少有高濃度的帶負(fù)電荷的基團(tuán), 例如磷酸基團(tuán)或EDTA等可能影響Mg2+ 離子濃度的物質(zhì),以保證zui適Mg2+ 濃度。

       

      4.  模板

      1PCR反應(yīng)必須以DNA為模板進(jìn)行擴(kuò)增, 模板DNA可以是單鏈分子,也可以是雙鏈分子,可以是線狀分子,也可以是環(huán)狀分子(線狀分子比環(huán)狀分子的擴(kuò)增效果稍好)。

      2)就模板DNA而言,影響PCR的主要因素是模板的數(shù)量和純度.一般反應(yīng)中的模板數(shù)量為102 -105 個(gè)拷貝,對于單拷貝基因,這需要0.1μg的人基因組DNA10ng的酵母DNA,1ng的大腸桿菌DNA.擴(kuò)增多拷貝序列時(shí),用量更少。

      3)靈敏的PCR可從一個(gè)細(xì)胞,一根頭發(fā),一個(gè)孢子或一個(gè)精子提取的DNA中分析目的序列。

      4)模板量過多則可能增加非特異性產(chǎn)物。DNA中的雜質(zhì)也會影響PCR的效率。

       

      5.  Taq DNA聚合酶

      一般Taq DNA聚合酶活性半衰期為92.5 130 min,95 40 min 97 5 min?,F(xiàn)在人們又發(fā)現(xiàn)許多新的耐熱的DNA聚合酶,這些酶的活性在高溫下活性可維持更長時(shí)間。

      Taq DNA聚合酶的酶活性單位定義為74下,30 min,摻入10 nmol/L dNTP到核酸中所需的酶量。Taq DNA聚合酶的一個(gè)致命弱點(diǎn)是它的出錯率,一般PCR中出錯率為2×10-4 核苷酸/每輪循環(huán),在利用PCR克隆和進(jìn)行序列分析時(shí)尤應(yīng)注意.100 μl PCR反應(yīng)中,1.5-2單位的Taq DNA聚合酶就足以進(jìn)行30輪循環(huán)。

      所用的酶量可根據(jù)DNA、引物及其它因素的變化進(jìn)行適當(dāng)?shù)脑鰷p.酶量過多會使產(chǎn)物非特異性增加,過少則使產(chǎn)量降低。

      反應(yīng)結(jié)束后,如果需要利用這些產(chǎn)物進(jìn)行下一步實(shí)驗(yàn),需要預(yù)先滅活Taq DNA聚合酶, 滅活Taq DNA聚合酶的方法有:

      1PCR產(chǎn)物經(jīng)酚:fang抽提,乙醇沉淀。

      2)加入10 mmol/LEDTA螯合Mg2+ 

      3 99-100加熱10 min。目前已有直接純化PCR產(chǎn)物的Kit可用。

       

      6.  反應(yīng)緩沖液

      1)反應(yīng)緩沖液一般含10-50 mmol/L Tris·Cl (20pH8.3-8.8) 50 mmol/L KCl和適當(dāng)濃度的Mg2+ 。Tris·Cl20時(shí)pH8.3-8.8,但在實(shí)際PCR反應(yīng)中,pH6.8-7.8. 50 mmol/LKCl有利于引物的退火。

      2)反應(yīng)液可加入5mmol/L的二硫蘇糖醇(DDT)100 μg/ml的牛血清白蛋白(BSA),它們可穩(wěn)定酶活性,另外加入T4噬菌體的基因32蛋白則對擴(kuò)增較長的DNA片段有利。

      3)各種Taq DNA聚合酶商品都有自己特定的一些緩沖液。

       

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